使用前请将 DTT 溶液全部加入到植物总蛋白提取试剂中。
液氮研磨:
1、 取大约 100 mg 植物组织样品,转移到预冷的研钵中。加入少量液氮,用研磨杵研磨成粉。
2、 加入 1ml 植物总蛋白提取液混匀,然后将混合液全部转移到 1.5 mL 的离心管中。
3、 4℃ 12,000 rmp/min 离心 10 分钟,组织残渣碎片将形成沉淀。
4、 将上清液转移至一新的 1.5 mL 离心管中即得到蛋白溶液,可置于-80℃ 冰箱保存或立即使用。
匀浆:
1、 称取植物组织样品 100 mg,剪刀剪成碎片,转移到预冷的 15mL 离心管中。
2、 加入 1ml 植物总蛋白提取液,在冰上用 Polytron 式匀浆机匀浆,直到没有肉眼可见的块状物。为了避免样品过热,可以分多次匀浆,其间放冰上让匀浆液冷却。
3、 将匀浆液全部转移到 1.5 mL 的离心管中。
4、 4℃ 12,000 rmp/min 离心 10 分钟,组织残渣碎片将形成沉淀。
5、 将上清液转移至一新的 1.5 mL 离心管中即得到蛋白溶液,可置于-80℃ 冰箱保存或立即使用。
注意事项:
1、 如果急用或者暂时没有液氮或者匀浆机,也可以正常研磨:称取植物组织样品 100 mg,剪刀剪成碎片,转移到预冷的研钵或离心管中; 加入 1ml 植物总蛋白提取液,用研磨杵研磨,直到没有肉眼可见的块状物。后续和液氮研磨步骤一致。
2、 植物组织中存在有大量的多酚、多糖、色素、次生代谢产物,如果需要除去植物蛋白样品中残存的色素等杂质,可以在最后得到的上清液中加入 5 倍体积的冷丙酮或冷甲醇,混匀后-20℃放置 1 小时或过夜,然后 4℃ 12,000 rmp/min 离心 10 min,弃上清后室温风干,然后将样品溶于自备的后续实验缓冲液中即可。经过此纯化处理后,部分蛋白质可能会发生变性, 不能再用于活性检测。
3、 本产品所含有较高浓度的去垢剂会对 Bradford 蛋白浓度测定有较大影响,因此只能使用 BCA法测定蛋白浓度。
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